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热击法进行大肠杆菌转化实验

来源: 2020/10/17 15:01:37      点击:
大肠杆菌的转化实验是生物相关实验中比较常用的一个。通过这个实验,一方面将重组DNA分子导入大肠杆菌受体细胞进行复制,增殖和表达,以获得目的基因。另一方面可以验证大肠杆菌感受态细胞效果,并且可以用于分子生物学其他研究。


实验方法原理


质粒DNA或重组DNA粘附在细菌细胞表面,经过42摄氏度短时间的热击处理,促进吸收DNA.然后在非选择培养基中培养一代,待质粒上所带的抗菌素基因表达,就可以在含抗菌素的培养基中生长。


一、实验材料准备


1. 器材


旋涡混合器,微量移液取样器,移液器吸头,1.5 ml 微量离心管,双面微量离心管架,干式恒温气浴(或恒温水浴锅),制冰机,恒温摇床,培养皿(已铺好固体LB-Amp),超净工作台,酒精灯,玻璃涂棒,恒温培养箱。


2. 试剂


培养基(不加抗菌素),LB培养基(加抗菌素),无菌ddH2O,IPTG,X-gal。


3. 材料处理


无菌ddH2O,1.5 ml 离心管装入铝制饭盒(灭菌)、移液器吸头装入相应的吸头盒(灭菌),20%IPTG(M/V),2% X-gal(M/V,用N,N-二甲基甲酰胺配)。


二、操作步骤


1. 事先将恒温水浴的温度调到42℃。


2. 从-70℃ 超低温冰柜中取出一管(100 ul)感受态菌,立即用手指加温融化后插入冰上,冰浴5~10 min。


3. 加入5 ul 连接好的质粒混合液(DNA含量不超过100 ng),轻轻震荡后放置冰上20 min。


4. 轻轻摇匀后插入42℃水浴中1~2 min进行热休克,然后迅速放回冰中,静置3~5 min。


5. 在超净工作台中向上述各管中分别加入500 ul LB培养基(不含抗菌素)轻轻混匀,然后固定到摇床的弹簧架上37℃震荡1 h。


6. 在超净工作台中取上述转化混合液100-300 ul,分别滴到含合适抗菌素的固体LB平板培养皿中,用酒精灯烧过的玻璃涂布棒涂布均匀。


7. 如果载体和宿主菌适合蓝白斑筛选的话,滴完菌液后再在平板上滴加40 ul 2% X-gal,8 ul 20% IPTG,用酒精灯烧过的玻璃涂布棒涂布均匀。


8. 在涂好的培养皿上做上标记,先放置在37℃恒温培养箱中30~60 min 直到表面的液体都渗透到培养基里后,再倒置过来放入37℃恒温培养箱过夜。


9. 在被细菌污染的桌面上喷洒70%乙醇,擦干桌面,写实验报告。


10. 观察平板上长出的菌落克隆,以菌落之间能互相分开为好。注意白色菌斑。


注意事项


1. 电击之前保持低温状态。


2.电击杯使用完,用针头蒸馏水反复冲洗杯底,再用70%乙醇浸泡,4℃存放,使用前烘干即可,或者烘干后,-20℃冰箱存放。


3.玻璃涂布棒上的酒精熄灭后稍等片刻,待其冷却后再涂。


关键实验材料


质粒DNA 重组DNA 旋涡混合器 微量移液取样器 恒温摇床